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上期為大家展現了自噬幹貨分享系列之經典自噬研究,那麽本期將繼續進行“自噬幹貨分享”,小編將帶大家一起來了解下內質網自噬。
內質網是真核細胞中的一種多性能細胞器,在蛋白質折叠、修飾、脂質和激素合成、離子儲存、代謝調節等多種細胞過程中發揮重要作用。當細胞受到內外因素刺激時,未折叠或錯誤折叠的蛋白質在內質網中大量積累,內質網的穩態就會受到破壞。此時,細胞會啟動自我保護程序,即未折叠蛋白反應(unfolded protein response,UPR),增強蛋白折叠活性,降低蛋白翻譯水平,加速內質網相關蛋白降解(ER-associated protein degradation,ERAD)。持續地內質網應激和未折叠蛋白反應可激活內質網自噬(ER-phagy),以維持內質網的穩態平衡。
Bernales等人在2007年首次提出了內質網自噬的概念。內質網自噬可分為(圖1):大內質網自噬(是由內質網駐留受體或內質網相關受體介導,這些受體招募自噬機製,然後將內質網靶向到自噬體中,包裹內質網碎片的自噬體與溶酶體融合以降解其內容物);微內質網自噬(不需要受體或形成自噬體,內質網碎片直接被溶酶體吞噬);此外,溶酶體也可直接與內質網來源的囊泡融合並進行降解(需要內質網自噬受體介導,但不涉及自噬體的形成),這一過程也稱作ERLAD(ER-to-lysosome-associated degradation)。
圖1. 內質網自噬
本期內容主要從內質網自噬過程、內質網自噬受體、內質網自噬監測方法及應用實例來進行展現。
1、內質網自噬過程
大內質網自噬是一個多步驟的過程:在內質網應激的誘導下(如未折叠蛋白反應、蛋白質聚集、營養缺乏和內質網結構破壞等),需要降解的內質網成分可以被特定的內質網自噬受體識別和標記。同時,細胞通過抑製mTOR或AMPK直接磷酸化Atg1/ULK1(哺乳動物中Atg1的同源物)來激活自噬體起始復合物,從而啟動隔離膜的組裝。類泛素蛋白Atg8/LC3/GABARAP將被招募到形成中的隔離膜上來幫助膜擴張,並識別和結合內質網自噬受體。之後,隨着隔離膜逐漸擴張和閉合,與待降解的內質網子域以及內質網自噬受體形成自噬體,最終自噬體與溶酶體融合並降解底物(圖2)。
圖2.大內質網自噬
微內質網自噬:在酵母中,當出現內質網應激或內質網過度擴張時,一部分內質網可以形成輪狀結構,然後被內陷的液泡膜吸收到液泡中進行降解。在哺乳動物細胞中,突變的I型前膠原蛋白可以被募集到 ERES(ER exit sites,內質網出口位點),COPII 外殼蛋白和自噬相關蛋白(SQSTM1、LC3 等)也可以被募集到這一位點,然後包含這些蛋白的ERES通過泛素化修飾並在微自噬等過程中被溶酶體吞沒。
ERLAD:當α1-抗胰蛋白酶Z(ATZ)聚合物在內質網中積聚時,分子伴侣蛋白如CALNEXIN可以將聚集體所在的內質網亞區分離。然後,在內質網自噬受體FAM134B的協助下,在該區域形成來源於內質網的、單層膜囊泡。此外,FAM134B與LC3的結合可以促進囊泡對RAB7/LAMP1陽性的內吞溶酶體膜的對接。最終,包含聚集體的囊泡與內吞溶酶體融合而被降解。
2、內質網自噬受體
2015年Nakatogawa和Dikic團隊分別在nature雜誌報道了酵母和哺乳動物中第一個內質網自噬受體Atg40和FAM134B。到目前為止,哺乳動物中已經有11個內質網自噬受體被報道,FAM134B、FAM134A、FAM134C、RTN3L、CCPG1、SEC62、TEX264、ATL3、CALCOCO1、p62和CDK5RAP3(圖3)。
圖3.內質網自噬受體
在酵母中,內質網自噬受體通過Atg8互作基序(Atg8-interacting moti,AIM)與自噬體上的Atg8結合,促進內質網被自噬體包裹。在哺乳動物中發現了6個Atg8同源物,包括LC3 的3種亞型(LC3A, LC3B和LC3C)和γ-氨基丁酸(GABA)-A型受體相關蛋白的3種亞型(GABARAP,GABARAPL1和GABARAPL2)。與酵母中內質網自噬受體和Atg8之間的相互作用一樣,哺乳動物中內質網自噬受體也通過LC3互作區(LC3-interacting
Region,LIR)與LC3和GABARAP家族蛋白結合,從而促進內質網片段被自噬體包裹。
3、內質網自噬監測方法
內質網自噬活性監測對於闡明內質網自噬的分子機製、生理和病理作用以及尋找調節內質網自噬的藥物具有重要意義。
透射電子顯微鏡可以觀察內質網自噬(圖4),但無法衡量內質網自噬活性。一些內源性內質網蛋白(如RTN1、RTN3、RTN4、REEP5、CLIMP63和Trap-α)在自噬中表達水平下降,但變化通常很小。相比之下,饑餓誘導的內質網自噬受體蛋白(如CCPG1和TEX264)的降解更明顯,但它們是選擇性降解的,並且在內質網自噬過程中也可能被誘導轉錄表達,不太能真實反應內質網自噬水平。但荧光標記的報告載體是自噬研究最常用的手段,如漢恒生物自噬研究的 “王牌工具” mcherry-EGFP-LC3自噬雙標病毒等,可以靈敏地衡量自噬水平。
圖4. 小鼠肾組織內質網自噬透射電鏡圖(紅色箭頭表示內質網膜,黑色箭頭表示自噬體膜)
基於此,漢恒生物嶄新推出了內質網自噬監測工具。通過將內質網定位序列與RFP-GFP荧光串聯序列融合表達來構建內質網自噬報告載體ssmRFP1-EGFP-KDEL(ss:內質網信號肽序列,ER signal sequence;KDEL內質網滯留序列)(圖5A)和mCherry-EGFP-RAMP4(RAMP4:即SERP1基因,Stress-associated endoplasmic reticulum protein 1,可以特異性定位到內質網膜上)(圖5B)。在細胞質中,紅色荧光蛋白和綠色荧光蛋白同時表達,表現為黃色;若發生內質網自噬,由於溶酶體偏酸性的環境,綠色荧光蛋白淬滅,只剩下紅色荧光信號。此外,在溶酶體中,報告載體ssmRFP1-EGFP-KDEL中的mRFP1與EGFP間的linker會被剪切,因此也可通過Western Blot結果分析mRFP1/mRFP1-EGFP比值來指示內質網自噬。
圖5. 漢恒內質網自噬監測工具原理圖
4、應用實例
2019年東京大學研究團隊為了研究TEX264是否為內質網自噬受體,利用ssmRFP1-EGFP-KDEL工具對野生型WT、FIP200-KO(自噬性能缺陷)及TEX264-KO的HeLa細胞在營養和饑餓條件下進行了內質網自噬監測,並通過在TEX264-KO的HeLa細胞中回補TEX264野生型及LIR突變型LIR4A,結合荧光成像(圖6A,圖6B)和Western Blot實驗(圖6C,圖6D),證明了TEX264是一個內質網自噬受體。
圖6. ssmRFP1-EGFP-KDEL工具監測HeLa細胞內質網自噬
威斯康星大學研究團隊2021年的文章中為了研究Atase1或Atase2的敲除是否會促進內質網自噬,利用mCherry-EGFP-RAMP4工具在小鼠胚胎成纖維MEF細胞中監測內質網自噬。通過荧光成像(圖7),分析有紅色荧光斑點的細胞占比(指示自噬溶酶體),證明了Atase1敲除,而不是Atase2敲除,會促進內質網自噬。
圖7. mCherry-EGFP-RAMP4工具監測MEF細胞內質網自噬
本期“內質網自噬研究”的展現就到此結束了,希望可以幫助大家了解到一定的內質網自噬基礎知識,並對內質網自噬監測報告載體有一定的認識。下期我們將繼續“自噬幹貨分享之線粒體自噬研究”,我們下期見哦。
參考文獻
He L, Qian X, Cui Y. Advances in ER-Phagy and Its Diseases Relevance. Cells. 2021;10(9):2328. Published 2021 Sep 6. doi:10.3390/cells10092328
Bernales S, Schuck S, Walter P. ER-phagy: selective autophagy of the endoplasmic reticulum. Autophagy. 2007;3(3):285-287. doi:10.4161/auto.3930
Reggiori F, Molinari M. ER-phagy: mechanisms, regulation, and diseases connected to the lysosomal clearance of the endoplasmic reticulum. Physiol Rev. 2022;102(3):1393-1448. doi:10.1152/physrev.00038.2021
Chino H, Mizushima N. ER-Phagy: Quality Control and Turnover of Endoplasmic Reticulum. Trends Cell Biol. 2020;30(5):384-398. doi:10.1016/j.tcb.2020.02.001
Mochida, K., Oikawa, Y., Kimura, Y., Kirisako, H., Hirano, H., Ohsumi, Y., et al. (2015). Receptor-mediated Selective Autophagy Degrades the Endoplasmic Reticulum and the Nucleus. Nature 522, 359–362. doi:10.1038/nature14506
Khaminets, A., Heinrich, T., Mari, M., Grumati, P., Huebner, A. K., Akutsu, M., et al. (2015). Regulation of Endoplasmic Reticulum Turnover by Selective Autophagy. Nature 522, 354–358. doi:10.1038/nature14498
Mochida K, Nakatogawa H. ER-phagy: selective autophagy of the endoplasmic reticulum. EMBO Rep. 2022;23(8):e55192. doi:10.15252/embr.202255192
Li J, Gao E, Xu C, Wang H, Wei Y. ER-Phagy and Microbial Infection. Front Cell Dev Biol. 2021;9:771353. Published 2021 Nov 29. doi:10.3389/fcell.2021.771353
Chino H, Hatta T, Natsume T, Mizushima N. Intrinsically Disordered Protein TEX264 Mediates ER-phagy. Mol Cell. 2019;74(5):909-921.e6. doi:10.1016/j.molcel.2019.03.033
Liang JR, Lingeman E, Ahmed S, Corn JE. Atlastins remodel the endoplasmic reticulum for selective autophagy. J Cell Biol. 2018;217(10):3354-3367. doi:10.1083/jcb.201804185
Rigby MJ, Lawton AJ, Kaur G, et al. Endoplasmic reticulum acetyltransferases Atase1 and Atase2 differentially regulate reticulophagy, macroautophagy and cellular acetyl-CoA metabolism. Commun Biol. 2021;4(1):454. Published 2021 Apr 12. doi:10.1038/s42003-021-01992-8
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